서울特別市 保健環境硏究院報 第39號	(2003)

Report of S.I.H.E., 39:251~259	(2003)

서울시내에서 유통 중인 가공식품의

GMO 모니터링

미생물검사팀

류승희․한창호․김경식․이성득․황영숙․전수진․황광호․박노운․최병현

GMO Monitoring of Processed

Foods Sold in Seoul

Microbial Inspection Team

Seung-hee Ryu, Chang-ho Han, Kyung-sig Kim, Sung-deuk Lee, Young-sook Hwang, Su-jin Jeon, Kwang-ho Hwang,

Noh-woon Park and Byung-hyun Choi

Abstract

This study was carried out to monitor whether the processed foods contain GMO using PCR method. QIAGEN DNeasy Plant Mini kit,  QIAGEN DNeasy Plant Maxi kit were used in order to extract DNA from samples. We used primers that were produced by Nippon Gene and PCR reagents produced by Applied Biosystem for GMO monitoring. In tests of 120 food samples derived from soybean, 119 food samples could be extracted DNA(99.2%). 7 of them  were detected 35S, RRS, NOS gene. So we knew that the foods contained GM soybean. In tests of 50 food samples derived from corn, 43 food samples could be extracted DNA(86%). None of them  were detected 35S, NOS gene. So we knew that the foods didn't contain GM corn.

Key words : GMO, PCR, DNA

서  론

세계인구가 급속히 증가함에 따라 식량증산은 인류 생존을 위한 필연적 과제이다. 그러나 1980년 중반이후 교배육종에 의한 식량증산은 그 한계를 보이고 있다. 이에 따라 유전자 변형에 의한 식량증산은 피할 수 없는 대안으로 부상하였다. 또한 유전자 변형기술 이전에 실시되었던 농약에 의한 생산성 증대는 이미 환경오염 등의 이유로 더 이상 기대하기 어렵게 되었다.

유전자 변형에 의한 농작물 개발은 식량증산, 노동력 절감, 농작물의 부가가치 제고 등의 목적으로 오늘날의 교배육종 만큼 전 세계적으로 일반화될 것이 확실시된다. 이러한 추세는 전 세계적으로 전작물에 걸쳐 확산될 것이다. 더욱이 유전자 변형의 종류와 효과도 현재의 규모와는 비교할 수 없는 정도로 급신장할 것이다(1).

유전자 재조합 또는 유전자 변형 작물은 식품의 질을 향상시키고, 병충해관리를 포함한 상업적인 농업경영과 관련된 문제를 해결하기위한 시도로 발전되어 왔다. 유전자재조합 작물이 재배되는 면적은 세계적으로 증가추세에 있다. 1996년에서 2001년 사이에 유전자재조합 작물의 재배면적은 1996년 1,700만 헥타르에서 2001년 5,260만 헥타르로 30배 이상 증가되었다(2).

또한 생명공학의 발달로 인하여 유전자재조합기술을 이용한 유전자재조합 농산물이 개발되고 있으며, 미국 53종, 일본 43종, 호주 22종, EU 18종 등이 안전성 승인을 받아서 시중에 유통되고 있다(3).

소위 유전자재조합식품이라 불리는 재조합 DNA 기술로 만들어진 새로운 식품의 급속한 확산은 그 장점에도 불구하고 특정 사람들 사이에 우려를 낳고 있다. 다양한 의견들이 표출되고 있지만 유전자재조합작물과 그 가공식품을 둘러싼 논쟁은 보통 그 안전성과 표시제라는 2가지 주제에 초점이 맞추어지고 있다. 이런 견지에서 많은 국가들과 국제기관들은 일반대중을 위한 제품정보에 중점을 둔 표시제에 대한 논의를 해오고 있다(4～7).

일반적으로 유전자재조합식품의 시험법으로는 유전자증폭장치(PCR)를 이용하여 유전자를 확인하는 방법과 항원항체반응을 이용하여 단백질을 확인하는 방법이 있다. 원료농산물이나 단순 분쇄가공품의 경우 제조․가공과정 중 단백질의 변성, 분해 등으로 단백질 분석방법의 적용은 어렵다(8).

PCR은 표시제의 신뢰도를 강화하기 위한 유망한 기술이다(9～17). PCR에 의한 정성분석방법은 유전자재조합식품 검출을 위한 초기 screening에 적합한 것으로 인정되었고(9～11), RT-PCR 또는 경쟁적 정량 PCR(QC-PCR)은 수치적 정보를 얻기 위한 유용한 기술이다(12～17).

본 연구는 서울 시내에서 유통되고 있는 콩 및 옥수수를 주원료로 하는 가공식품 중 유전자재조합 원료 사용 실태의 과학적 분석조사를 위한 모니터링을 실시하여, 시민에게 정보를 제공함으로써 소비자의 알권리를 충족시키고, 유전자재조합식품 표시제의 이행실태 및 표시감시에 도움을 주고자 하였다.

재료 및 방법

1. 실험재료

2003년 4월부터 6월에 걸쳐 서울 시내 유통 중인 두부, 두유 등 콩을 주원료로 한 가공식품 120건, 옥수수를 주 원료로 한 가공식품 50건을 구입하여 GMO 검출 실험을 하였다.

가공식품의 DNA는 QIAGEN의 DNeasy Plant Maxi 및 Mini Kit를 사용하여 추출하였으며, 유전자재조합 원료의 함유 여부를 알아보기 위한 프라이머는 Nippon Gene Co.(FASMARK Co.)의  Le1n02, P35S-1, NOS ter-2, SSIIb 등을 사용하였다. PCR 시약은 Applied Biosystems의 Taq polymerase, dNTPs, PCR buffer, MgCl2 등을 사용하였다.

2. 시료 전처리

시료 전처리는 식품의약품안전청의 유전자재조합식품 검사 지침에 따라 실험하였다(8).

두부 및 두유 등의 가공식품은 55℃ 건조기에서 하룻밤 방치하여 수분을 증발시켜 남은 고형분을 분쇄기를 이용하여 분쇄하였으며, 시럽으로 코팅한 스낵과자 등 당분 함량이 높은 시료는 분쇄기를 이용하여 분쇄한 후 50ml 폴리프로필렌 튜브에 넣고 멸균 증류수를 가하여 당분을 녹인 후 원심분리하여 얻어지는 고형분을 시료로 취하였다. 동 조작을 수회 반복하여 당분을 충분히 제거하였다.

3. DNA 추출 및 농도측정

QIAGEN DNeasy Plant Mini kit 및 Maxi kit를 이용하여 콩 및 옥수수를 주원료로 한 가공식품의 DNA를 분리하였다. DNA는 한 시료 당 2반복으로 추출하였다.

균질하게 분쇄된 시료 100mg을 2ml 튜브에 넣어, 미리 65℃로 가온한 AP1 완충액 400㎕와 RNase A(100mg/ml) 4㎕를 가하여 혼합기로 잘 혼합하여, 65℃에서 10분간 반응시키면서 3～5분마다 한번씩 튜브를 손으로 전도하여 시험재료를 혼합하였다. AP2 완충액 130㎕를 가하여 얼음 위에 5분간 방치한 후, 14,200xg로 5분간 원심분리 후 맑은 상층액을 QIA Shredder Spin Column에 가하여 14,200xg로 2분간 원심 분리하여 칼럼을 통과한 여액을 새로운 튜브에 옮겼다. 여기에 에탄올을 첨가한 AP3 용액을 1.5배량을 가하여 즉시 혼합한 후 DNeasy Mini Spin Column에 가하여 14,200xg에서 2분간 원심 분리하여 DNA를 칼럼에 부착시킨 후 칼럼을 통과한 하층액은 버렸다. 칼럼을 AW 용액 500㎕를 가하여 원심 분리하여 세척한 후, 새로운 1.5ml 튜브에 옮겨 미리 65℃로 가온한 멸균수 50㎕를 가하여 실온에서 5분간 방치한 후 14,200xg로 1분간 원심 분리하여 DNA를 용출시켰다. 용출액을 1.5ml 튜브에 옮겨 동량의 이소프로필알콜을 가하여 14,200xg로 15분간 4℃에서 원심 분리한 후 침전물에 닿지 않도록 마이크로피펫으로 상층액을 제거하였다. 200㎕의 70% 에탄올을 벽면으로 조심스럽게 가하고 다시 피펫으로 상층액을 제거한 후, 14,200xg로 1분간 4℃에서 원심 분리한 후 잔류하는 에탄올을 피펫으로 제거하고 침전물은 건조시켰다. 건조한 침전물에 50㎕의 멸균수를 가하여 15분간 실온에서 방치하면서 때때로 잘 섞어서 완전히 용해되도록 하여 이를 DNA시료 원액으로 하였다.

DNA시료 원액 2㎕를 TE완충액으로 50배 희석하여 260, 280nm에서 각각 흡광도를 측정하였다.

또한 DNA 추출여부를 확인하기 위해 0.8% 아가로스겔(agarose gel) 전기영동을 실시하였다.

4. 정성 PCR(Polymerase Chain Reaction)

정성 PCR법은 추출된 DNA의 일부를 주형 DNA(template)로 하여 검색하고자 하는 유전자의 프라이머를 이용하여 유전자를 증폭한 후 전기영동법에 의하여 증폭 DNA를 확인하는 방법이다(8). 추출한 DNA를 주형으로 유전자가 증폭되는 것을 확인하기 위하여, 각 원료에 대응하는 내재성 유전자용 프라이머를 이용한 PCR을 함께 행하여, 목적하는 증폭산물이 얻어지는 지를 확인해야한다. 유전자재조합 원료의 함유 여부를 알아보기 위한 PCR은 Applied Biosystem의 PCR시약을 사용하여 GeneAmp PCR 9700으로 실시하였다. PCR은 추출한 DNA에 대하여 2반복으로 실시하였다. 즉 각 시료별로 4회의 PCR 반복실험을 하였다.

콩 및 옥수수의 DNA가 추출되어 있음을 확인하기 위해 각각의 내재성 유전자의 검출을 위한 PCR도 함께 실시하였다. 또한 시약 및 PCR과정에 오염 등으로 인한 실험의 오류가 발생하지 않았다는 것을 확인하기 위해 주형 DNA를 넣지 않은 음성 대조군과 Nippon Gene의 Positive Control Plasmid를 이용한 양성 대조군도 함께 실험하였다. GMO 모니터링을 위한 정성 PCR법에 사용한 프라이머는 Nippon Gene사에서 생산하는 프라이머를 이용하였으며, 사용한 프라이머는 표 1과 같다.

1) PCR 반응 시약의 조제

PCR 반응에 필요한 시약과 조성은 표 2와 같다.

PCR을 하고자 하는 시료수에 맞춰 사용하는 튜브의 수를 정하여 이에 따른 전체 사용액의 양을 여유분을 두고 정한 후, 위의 액량과 비교하여 적당한 배율이 되도록 template DNA를 뺀 각 액을 혼합조정하여 각 반응튜브에 각 24㎕씩 소분하였다. PCR반응의 음성대조군(negative control)으로 프라이머를 첨가하지 않은 반응액과 DNA시험액을 첨가하지 않은 것은 별도로 조제하였다.

2) PCR 증폭반응

반응시약을 24㎕씩 분주한 튜브에 template DNA용액 1㎕(25～50ng)를 첨가하였다. 시료의 첨가는 음성대조군, 추출한 DNA, 양성대조군의 순서로 행하였다.

모든 용액을 첨가한 후 PCR을 실시하였는데, PCR의 반응조건은 95℃에서 10분간 방치하여 최

Table 1. Primer for GMO monitoring

Target gene		Sign	Amplification size
Soybean	hose keeping gene promoter gene terminator gene recombinant gene	Le1n02-5', Le1n02-3' P35S1-5', P35S1-3' NOS ter 2-5', NOS ter 2-3' RRS 01-5', RRS 01-3'	118bp 101bp 152bp 121bp
Corn	hose keeping gene promoter gene terminator gene recombinant gene 〃 〃 〃 〃	SSIIb 1-5', SSIIb 1-3' P35S1-5', P35S1-3' NOS ter 2-5', NOS ter 2-3' E176 2-5', E176 2-3' Bt11 3-5', Bt11 3-3' GA21 3-5', GA21 3-3 T25 1-5', T25 1-3' MON810 2-5', MON810 2-3'	151bp 101bp 152bp 100bp 128bp 133bp 149bp 113bp

초의 변성을 일어나게 한 후, 95℃에서 30초간 변성시키고(denaturation), 60℃에서 30초간 유전자를 결합시키며(annealing), 72℃에서 30초간 증폭반응(extension)이 일어나도록 하는 것을 1회로 하여, 40회 반응시킨다. 40회 반응이 이루어진 후 72℃로 7분간 연장반응을 한 후 4℃에서 보존되도록 설정하였다.

이를 정리하면 표 3과 같다.

3) 전기영동

위의 PCR 결과 얻어진 반응액을 PCR 증폭 반응액으로하여, 아가로스겔(agarose gel) 전기영동에 의해 결과를 확인하였다.

Table 2. Reagents of PCR reaction

composition	final concentration	concentration of stock solution
Polymerase	0.625U/tube	5U/㎕
PCR buffer	1×	10×
MgCl2	1.5mM	25mM
dNTPs	200uM	2.5mM
Each primer	0.5uM	100uM
Template DNA	25～50ng/tube	50ng
Distilled water	to total volume 25㎕
Total	25㎕

1×TAE 완충용액에 아가로스겔(LO3, Takara)을 넣고 가열하여 1.5%로 농도를 맞추었다.

PCR 증폭 반응액 7㎕에 1/6배의 염색액(gel loading buffer, bioneer)을 가하여 겔의 각 홈에 시료를 넣고 같은 겔 위에 Marker DNA(100bp DNA ladder, bioneer)도 함께 주입하여 100V의 전압에서 전기영동 하였다.

증류수 100ml당 5㎕의 이티디움 브로마이드용액(10mg/ml)을 넣은 용액에 전기영동을 끝낸 겔을 넣은 후, 용기를 진탕기에 올려놓고 가볍게 진동시키면서 30분간 염색한 후 다시 30분간 증류수에 담가 탈색시킨 후 Gel Documentation Systems (BIO-RAD)을 이용하여 밴드를 분석하였다.

Table 3. PCR conditions of GMO monitoring

	Temperature	Time	cycle
Pre renaturation	95℃	10min	1 cycle
Denaturation Annealing Extension	95℃ 60℃ 72℃	30sec 30sec 30sec	40 cycle
Elongation	72℃	7min	1 cycle
Hold	4℃	-	-

결과 및 고찰

1. DNA 추출 결과

콩을 주원료로 한 가공식품의 경우 QIAGEN Mini kit를 이용한 DNA추출이 가능하였지만, 옥수수를 주 원료로 한 가공식품의 경우 QIAGEN Mini kit로 추출이 되지 않는 경우가 많아 QIAGEN Maxi kit를 이용하여 DNA를 추출하였다. 이러한 결과는 콩을 원료로 한 가공식품의 경우 두부, 두유, 쌈장 등과 같이 대부분 원료 중 콩의 비율이 높고 가공공정과정에서 DNA 분해가 비교적은 반면, 옥수수를 원료로 한 가공식품의 경우 콘칩 등의 과자류처럼 가공공정에서 기름에 튀기는 등 고열처리로 DNA의 분해정도가 심해 DNA 추출이 어렵기 때문이다. 또한 비슷한 이유로 콩 가공식품의 경우 120건의 시료 중 1건(0.83%)만이 다양한 방법을 동원해서도 콩 DNA를 추출할 수 없었던 반면, 옥수수 가공식품의 경우 50건의 시료 중 7건(14%)에서 옥수수 DNA를 추출할 수 없었다.

추출된 DNA의 크기와 가공과정에서의 파괴 정도를 알아보기 위해 0.8% agarose gel 전기영동을 실시하였다. 콩 가공식품의 추출된 DNA의 전기영동 결과는 그림 1과 같았다.

위의 결과에서 열처리나 가압 과정이 없는 날콩가루 등은 DNA가 파괴되지 않고 원형이 그대로 남아있는 상태이고, 볶은 콩가루, 메주가루 등의 가공식품의 경우 가공과정에서 DNA가 파괴되어 다양한 크기의 절편으로 분리되어 추출되는 것을 확인할 수 있었다.

Fig. 1. Agarose gel electrophoresis of DNA from processed foods derived from soybean. Lane 1, 2 are parched soybean powder, lane 3, 4 are uncooked soybean powder, lane5 are λHind Ⅲ DNA ladder, lane 6, 7 are uncooked soybean powder, lane 8 to 15 are soybean malt powder, lane 16, 17 are cereal powder.

콩을 주원료로 한 가공식품 중 쌈장 1종은 여러 종류의 DNA추출방법을 이용하여 추출을 시도하였지만 콩의 내재성 유전자인 Lectin이 검출되지 않았다. 보통의 쌈장의 경우 원료 콩을 직접 발효하여 콩의 원형이 남아 있는 반면, DNA가 추출되지 않은 쌈장은 메주가루를 이용해 가공과정을 거쳐 콩의 원형이 남아있지 않은 상태였으며, 가공과정 중 DNA가 파괴된 것으로 생각된다. DNA가 추출되지 않은 가공식품의 경우 PCR을 통한 GMO 정성검사가 불가능하다.

옥수수 가공식품의 추출된 DNA의 전기영동 결과는 그림 2와 같았다.

Fig. 2. Agarose gel electrophoresis of DNA from processed foods derived from corn. Lane 1 is λHind Ⅲ DNA ladder, from lane 2 to 17 are cereal.

옥수수를 주원료로 한 가공식품의 경우 대부분 많은 가공이 이루어져, QIAGEN  Mini kit를 이용하여  DNA 추출을 했을 경우 옥수수의 내재성 유전자인 SSIIb가 검출되지 않는 결과를 보였다. 따라서 모든 시료를 QIAGEN Plant Maxi kit를 이용하여 DNA를 추출하였다.

0.8% agarose gel을 이용한 전기영동 결과를 보면 옥수수가공식품의 경우 콩가공 식품보다 검출된 DNA농도도 낮고, DNA가 많이 파괴되어 있음을 알 수 있다.

또한, 강냉이, 티백으로 된 옥수수차, 과자류 등 7건의 시료에서 옥수수 DNA가 검출되지 않았다.

옥수수가공식품의 경우 콩가공 식품보다 내재유전자가 검출되지 않는 경우가 많은데, 이는 가공식품 중 옥수수의 비율이 낮고, 고온, 고압 등의 가공과정을 거치면서 DNA의 파괴가 많이 일어나기 때문이다.

과자류의 경우 대부분 당류가 많이 함유되어 DNA를 추출할 때, 추출한 DNA 중에 당류가 남아 PCR의 방해물질로 작용하는 것을 방지하기 위해 멸균 증류수를 이용하여 2~3 차례 세척 후 DNA를 추출하였다.

2. 정성 PCR을 통한 GMO 검사

매 PCR마다 PCR 반응계가 올바르게 이루어졌는가를 확인하기 위해 목적하는 유전자재조합 DNA를 함유한 양성대조군으로 콩의 내재성 유전자인 Lectin gene, 옥수수의 내재성 유전자인 SSIIb gene, 전사개시유전자(promoter gene)인 35S gene과 전사종결유전자(terminator gene)인 NOS gene의 증폭여부를 알아보았으며, PCR 반응계의 오염을 확인하기 위한 음성대조군으로 주형 DNA를 함유하지 않은 것을 시료와 함께 PCR을 실시하였다.

그림 3과 4는 Nippon Gene사의 GM Soybean (RRS) Detection Positive Control Plasmid와

Fig. 3. Agarose gel electrophoresis of nucleic acid amplification products from GM Soybean(RRS) Detection Positive Control Plasmid using Le1n02, P35S1, RRS01, NOS ter2 primer. Lane 1, 3, 6, 8 are Positive Control Plasmid, lane 2, 4, 7, 9 are no template control, lane 5 is 100bp DNA ladder.

Fig. 4. Agarose gel electrophoresis of nucleic acid amplification products from GM Maize Detection Positive Control Plasmid using SSIIb1, P35S1, NOS ter2 primer. Lane 1, 3, 6 are Positive Control Plasmid, lane 2, 4, 7 are no template control, lane 5 is 100bp DNA ladder.

GM Maize Depiction Positive Control Plas- mid의 정성 PCR을 실시하여 얻어진 전기영동 사진이다. 각 프라이머를 이용하여 목적하는 PCR 증폭산물을 얻어냈으며, DNA를 함유하지 않은 음성대조군에서 증폭이 되지 않아, PCR이 오염 없이 올바르게 이루어졌으며 그 결과를 신뢰할 수 있음을 확인하였다.

그림 5와 그림 6은 콩 가공식품을 Le1n02, P35S1, RRS01, NOS ter2 프라이머를 사용하여 PCR하여 얻어진 전기영동 사진이다. 각 그림은 한 시료에 대하여 위의 네 가지 프라이머에 대한 PCR 결과를 100bp DNA ladder를 중심으로 양쪽에 나타낸 것이다.

Fig. 5. Agarose gel electrophoresis of nucleic acid amplification products from soybean milk using Le1n02, P35S1, RRS01, NOS ter2 primer. From lane 1 to 4 and from 5 to 8 are soybean milk, lane 5 is 100bp DNA ladder.

Fig. 6. Agarose gel electrophoresis of nucleic acid amplification products from soy- bean milk using Le1n02, P35S1, RRS01, NOS ter2 primer. From lane 1 to 8 (except lane 4, 6) are soybean milk, lane 4 is blank and lane 6 is 100bp DNA ladder.

그림 5의 두 시료와 그림 6의 첫 시료는 각각의 프라이머에 해당하는 증폭산물이 모두 생성되어 원료에 GMO가 포함되어 있음을 확인할 수 있다. 하지만 PCR 반응의 민감도가 높아 GMO (Genetically Modified Organism)함량이 0.1%의 낮은 수준인 경우까지도 검출할 수 있다(18). 또한 그 검출한계가 0.01%까지 감도가 높아지고 있는 실정이다(19). 이는 우리나라가 인정하고 있는 비의도적인 혼입치인 3%나, EU가 규정하고 있는 1%의 혼입치(20) 보다 낮은 수준이기 때문에 정성검사에서 GMO 양성으로 판정되었다 해도 유전자재조합식품등의표시기준(21) 위반이라고 할 수 없다. 이에 따라 유전자재조합식품 정량검사의 필요성이 대두되고 있다. 정성분석결과 GMO 혼입이 확인된 시료에 대한 2차 검정으로 GMO 혼입량을 확인할 수 있는 검정방법을 세계 각 국에서 개발하고 있으나, 정확한 표준정량곡선을 얻기 위한 표준시료 확보 문제, 농산물의 종류에 따라 유전자의 복제수가 달라 이를 보정해야하는 어려움이 있어, 아직까지 국제적으로 공인된 방법은 정해지지 못하고 있다(19). 이는 앞으로 우리가 풀어가야 할 문제이다.

그림 6의 두 번째 시료는 콩의 내재성 유전자인 lectin에 해당하는 증폭산물이 얻어지고 재조합유전자인 35S promoter와 RRS(Round-up Ready Soybean), NOS terminator를 이용한 PCR 결과 증폭산물이 생성되지 않은 것으로 보아 원료 콩 중에 GMO가 혼입되지 않았음을 확인할 수 있었다.

RRS(Round-up Ready Soybean) gene은 1996년 몬산토(Monsanto)社가 개발한 제초제(글리포세이트)에 내성이 있는 콩인 「라운드업레디 콩(Roundup Ready Soybean)」에 삽입된 유전자이다.

그림 7은 옥수수 가공식품을 SSIIb1, P35S1, NOS ter2 프라이머를 사용하여 PCR하여 얻어진 전기영동 사진이다. 각 그림은 한 시료에 대하여 위의 세 가지 프라이머에 대한 PCR 결과를 100bp DNA ladder를 중심으로 양쪽에 나타낸 것이다. 두 시료 모두 옥수수의 내재성 유전자인 SSIIb에 해당하는 증폭산물이 얻어지고 재조합유전자인 35S promoter와 NOS terminator를 이용한 PCR 결과 증폭산물이 생성되지 않은 것으로 보아 원료 옥수수 중에 GMO가 혼입되지 않았음을 확인할 수 있었다.

콩 가공식품의 경우 총 120건의 시료 중 DNA가 검출되지 않은 1건을 제외한 119건에 대한 PCR결과 119건 중 유부 4건, 두유 3건 총 7건에서 35S, RRS, NOS가 검출되어 GMO 양성으로 판정하였다. GMO 양성으로 판정된 7건의 시료에 사용된 원료 콩의 원산지는 모두 미국이었다. 옥수수 가공식품의 경우 총 50건의 검체 중 DNA가 검출되지 않은 7건을 제외한 43건에 대한 PCR결과 43건 모두 35S, NOS가 검출되지 않아 GMO 음성으로 판정하였다.

Fig. 7. Agarose gel electrophoresis of nucleic acid amplification products from proce- ssed foods derived from corn using SSIIb1, P35S1, NOS ter2 primer. Lane 1 is blank, from lane 2 to 4 are cereal, lane 4 is 100bp DNA ladder, from lane 5 to 8 are corn for popcorn.

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19. 식품의약품안전청 : 유전자재조합식품개요 (http://kfda.go.kr)

20. 농촌진흥청 : 유전자변형농산물(GMO) 검정기술 워크숍 발표요지, 2001.

21. 식품의약품안전청 : 유전자재조합식품 표시제, 2001.